谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶（glutathione S-transferase，GST）試劑盒
分光光度法
規(guī)格：50T/48S
產(chǎn)品內(nèi)容：
試劑一：液體×1 瓶，4℃保存。
試劑二：液體×1 瓶，4℃保存。
試劑三：粉劑×1 瓶，4℃保存。臨用前加5 mL 蒸餾水溶解。 產(chǎn)品說明：
GST 是一種具有多種生理功能的蛋白質(zhì)家族，主要存在于細胞質(zhì)內(nèi)。GST 是體內(nèi)解毒酶系統(tǒng)
的重要組成部分，主要催化各種化學(xué)物質(zhì)及其代謝產(chǎn)物與GSH 的巰基共價結(jié)合，使親電化合物變
為親水物質(zhì)，易于從膽汁或尿液中排泄，達到將體內(nèi)各種潛在或具備毒性的物質(zhì)降解并排出體外
的目的。因此，GST 在保護細胞免受親電子化合物的損傷中發(fā)揮著重要的生物學(xué)功能。此外，因
為GST 具有GSH-Px 活性，亦稱為non-Se GSH-Px，具有修復(fù)氧化破壞的大分子如DNA、蛋白質(zhì)
等的功能。注意，GST 催化的反應(yīng)減少GSH 含量，但是不增加GSSG 含量。
GST 催化GSH 與CDNB 結(jié)合，其結(jié)合產(chǎn)物的光吸收峰波長為340nm；通過測定340nm 波長
處吸光度上升速率，即可計算出GST 活性。 自備儀器和用品：
紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調(diào)節(jié)移液器、1mL 石英比色皿和蒸餾水。 操作步驟：
一、粗酶液提取：
1. 組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(mL)為1：5~10 的比例（建議稱取約0.1g 組織，加入
1mL 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心10min，取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數(shù)量（104個）：試劑一體積（mL）為500~1000：1 的比例（建議500
萬細胞加入1mL 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3 秒，間隔7 秒，總時間
3min）；然后8000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。
3. 血清等液體：直接測定。 二、測定操作：
1. 分光光度計預(yù)熱30 min，調(diào)節(jié)波長到340 nm，用蒸餾水調(diào)零。
2. 試劑三放在25℃（一般物種）或者37℃（哺乳動物）保溫。
3. 空白管：取1mL 石英比色皿，加入100μL 試劑一，900μL 試劑二和100μL 試劑三，迅速混勻后
于340nm 測定吸光度變化，記錄10 s 和310 s 吸光度為A1 和A2。
4. 測定管：取1mL 石英比色皿，加入100μL 上清液，900μL 試劑二和100μL 試劑三，迅速混勻后
于340nm 測定吸光度變化，記錄10 s 和310 s 吸光度為A3 和A4。 注意：空白管只需測定一次。 1. 樣品處理等過程均需要在冰上進行，且須在當(dāng)日測定酶活力；
2. 細胞中GST 活性測定時，細胞數(shù)目須在300 萬-500 萬之間，細胞中GST 的提取時可加試劑一
后研磨或超聲波處理，不能用細胞裂解液處理細胞；
3. 本法測定GST 活性的線性范圍可達76 μmol/min /L，測定前先用1～2 個樣做預(yù)實驗，如5min
內(nèi)反應(yīng)不成線性，須對樣品用蒸餾水稀釋，計算結(jié)果乘以稀釋倍數(shù)；
4. 測定反映的溫度對測定結(jié)果有影響，請控制在25℃或者37℃（哺乳動物）。 | 
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